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  • 蓝色预染超低分子量蛋白质Marker(3.3-31 kD)
  • 蓝色预染超低分子量蛋白质Marker(3.3-31 kD)

  • 商品型號

  • 商品規格

    产品编号:RTD6152

    产品规格:10次(100μl)

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蓝色预染超低分子量蛋白质Marker(3.3-31 kD)

 

Blue Ultra Low Molecular Weight Protein Marker (3.3-31 kD)              Ver750260-1.0

●产品编号及规格:

RTD6152   10次(100 μl)

● 贮存、运输及效期:

   -20℃贮存;湿冰运输;有效期12个月。

● 产品简介:

本产品包含预染的3种多肽和2种低分子量蛋白质组成,分子量大小范围为~3. 3,~6.5,~14.4,~20.1,~31 kD。可以用于直接观察蛋白质电泳状况以及清晰地判断Western Blot的转膜效果。经Tricine-甘油SDS-PAGE凝胶电泳时以及转移到PVDF或NC膜上可看到清晰的5条蓝色的蛋白条带。以每次上样10 μl计算,该产品可以使用20次。

● 使用说明:

第一次收到该产品,常温融化后,彻底混匀,离心快甩将溶液完全收集到管底。本产品为即用型,溶化后既能使用,不能95℃加热处理。

一. 制胶:

先配制分离胶,聚合后再配制夹层胶,最后配制浓缩胶,3种胶的制胶体积比约为4.5:1.5:1.5(注:表一中夹层胶和浓缩胶配制体积是过量的,制胶时不要全部加入)。

1.1 配制分离胶:

1.1.1 按照表一将不同体积的组份加入到小烧杯中混合。

1.1.2 加入10%APS和TEMED,立即混匀以使溶液混匀。

1.1.3 在玻璃板中灌入分离胶溶液,然后轻轻覆盖一层1-3 cm的无水乙醇,使凝胶表面保持平整。

1.1.4 静置10-20分钟,待分离胶和乙醇层之间出现一个清晰的界面表示凝胶已聚合。

注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。分离胶37℃约10分钟,25℃约15分钟,18℃ 约20分钟可以聚合。

1.2 配制夹层胶:

1.2.1 去除覆盖在分离胶上的醇,用滤纸将残留的醇吸去。

1.2.2 按照表一将不同体积的组份加入到小烧杯中混合。

1.2.3 加入10%APS和TEMED,立即混匀使溶液混匀。

1.2.4 在玻璃板中灌入适量夹层胶溶液,然后在溶液上轻轻覆盖一层1-3cm的无水乙醇,使凝胶表面保持平整。注:此溶液为过量,请勿全部注入。

1.2.5 静置20-30分钟,待夹层胶和乙醇层之间出现一个清晰的界面表示凝胶已聚合。

注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。夹层胶37℃ 20分钟,25℃ 25分钟,18℃ 约30分钟可以聚合。

1.3 配制浓缩胶

 

1.3.1 去除覆盖在夹层胶上的乙醇,用滤纸将残留的醇吸去。

1.3.2 按照表一将不同体积的组份加入到小烧杯中混合。

1.3.3 加入10%APS和TEMED,立即混匀,以使溶液充分混匀。

1.3.4 将梳子插入凝胶内,避免产生气泡。

1.3.5 静置20-40分钟装待凝胶聚合。

注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。浓缩胶37℃ 20分钟,25℃ 30分钟,18℃ 40分钟可以聚合。

表一  (一块1 mm 厚度小板胶用量)

 

 

 

分离胶

夹层胶

浓缩胶

 

 

16.5%T6%C/4.5 ml

10%T3%C/2 ml

5%T3%C/2 ml

49.5%T 3%C

/

0.4 ml

0.2 ml

49.5%T 6%C

1.5 ml

/

/

4×凝胶缓冲液

1.125 ml

0.5 ml

0.5 ml

50%甘油(v/v)

0.9 ml

-

-

ddH2O

0.95 ml

1.1 ml

1.3 ml

10%APS

~45 μl

~20 μl

~20 μl

TEMED

~4.5 μl

~2 μl

~2 μl

 

注:如非必须,不要使用1.5mm厚度的凝胶,这样会减少电泳后染色和脱色的时间。

二. 电泳:

2.1 电泳缓冲液配制:

  电泳前,将10×阳极缓冲液(Cat No:AB080)和10×阴极缓冲液(Cat No:CB010)用蒸馏水稀释成1×缓冲液备用。

2.2 样品处理:

  待上样的检测样品与2×Tricine上样缓冲液(Cat:TP050)等体积混合,95℃处理5分钟后上样。蛋白Marker一般已经含有上样缓冲液,预染Marker不能加热处理,混匀后直接上样,非预染Marker一般需要95℃处理5 min后上样。

2.3 电泳:

  将电泳槽的外槽加入1×阳极缓冲液,内槽加入1×阴极缓冲液,轻柔拔出梳子,将Marker或蛋白样品加入点样孔,稳压电泳(电泳条件参考下表)

浓缩胶

恒压 30 V

35-45 min

夹层胶

恒压 80 V

30-40 min

分离胶

恒压 120 V

80-100 min

待指示前沿到达分离胶下沿时,即可停止电泳,电泳时间总计2-4小时

 三. 凝胶检测:

 

注:多肽染色可以用配方7和8(表二)进行染色和观察。如果使用该配方进行染色时效果不好或考虑其毒性,请选择FastBlue蛋白染色液(Cat No:RTD6202),该产品能在60分钟之内完成蛋白的染色,不至于小肽在染色和脱色中从凝胶中脱离,是常规染色液的理想替代品。

3.1 染色(以FastBlue蛋白染色液染色为例):

3.1.1 将电泳后的PAGE胶取下放入塑料容器中,用适量蒸馏水漂洗,去除胶表面的SDS,残余SDS会导致染色液出现沉淀。

3.1.2 弃蒸馏水,加入适量染色液(以刚刚覆盖过胶面为适),摇床上常温摇动,根据下表确定染色时间。

待检测蛋白量

染色时间

>1 μg

~5分钟

100 ng-1 μg

~10分钟

10 ng-100 ng

~60分钟

 

3.2 转膜:

多肽电泳后转膜选择孔径0.22 μm PVDF膜(用前用甲醇处理润湿)或0.22 μm NC膜。

3.2.1 半干转:

使用伯乐Trans-Blot Turbo半干转机器请选择配套的5×RealBlot快速半干转转膜缓冲液(货号:RT5030),推荐转膜条件:一板小型凝胶(8×10 cm)恒流,1.3 A,10-15 min。

3.2.1 湿转:

湿转转膜缓冲液(25 mM Tris,192 mM Glycine, 0.01%SDS,20% Methanol,pH~8.3),可以选择10×Tris-甘氨酸转膜缓冲液(货号:TB1040)。推荐转膜条件:恒流200 mA  40-60 min。

四.小分子蛋白质SDS-PAGE电泳试剂配制:

1. 49.5%T3%C PAA(Cat:PS080)    

   丙稀酰胺         48 g    

   甲叉双丙稀酰胺  1.5 g

 用ddH2O溶解后定容至100 ml,

过滤后使用。

贮存:4℃

2. 49.5%T6%C PAA(Cat:PI080)    

   丙稀酰胺         46.5 g    

   甲叉双丙稀酰胺      3 g

 用ddH2O溶解后定容至100 ml,

过滤后使用。

贮存:4℃

3. 4×凝胶缓冲液(Cat:GB010)

[4 M Tris; 0.4% SDS; pH8.45]

Tris碱  48.4 g

ddH2O   80 ml

0.4 g SDS或4 ml 10% SDS

用HCl调pH值至8.45 25℃.

用ddH2O定容至100 ml;贮存:4℃

4. 10×阳极缓冲液(Cat:AB080)

[2 M Tris pH8.9]

Tris碱    121.1 g

ddH2O      400 ml

用HCl调pH值至8.9

用ddH2O定容至500 ml

贮存:4℃

注:使用前稀释成1×阳极缓冲液使用。

5. 10×阴极缓冲液(Cat:CB010)

[1M Tris;1M Tricine;1% SDS;pH 8.3]

Tris碱  121.14 g

Tricine  179.2 g

SDS 10 g

用水溶解,定容至1000 ml(不用调pH)。

贮存:4℃

注:使用前稀释成1×阴极缓冲液使用

6. 2×Tricine多肽上样缓冲液(变性,还原)

(Cat:TP050)

2 ml  1M Tris-Cl pH6.8

5 g 甘油

0.2 g  SDS

0.2 g DTT(或者400 μl β-巯基乙醇)

4 mg 考马斯亮蓝G-250

用灭菌ddH2O定容至10 ml

混匀分装-20℃贮存备用

7. 染色液

冰醋酸            100 ml

考马斯亮蓝G-250   0.25 g

水                900 ml

8. 脱色液

冰醋酸  100 ml

水      900 ml

9. 50%甘油

甘油               50 ml(63克)

超纯水            定容到100 ml

贮存:4℃

 

 

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