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  • 植物总蛋白提取试剂盒-通用型
  • 植物总蛋白提取试剂盒-通用型

  • 商品型號

  • 商品規格

    产品编号:RTD8103

    产品规格:20次

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植物总蛋白提取试剂盒-通用型

Plant Total Protein Isolation Kit(for general use)

 

货号

名称

规格

RTD8103

植物总蛋白提取试剂盒-通用型

20 次

 

 

● 产品组成:

序号

产品货号

名称

规格

贮存

运输

1

RTD8103-01

试剂A-样本杂质去除剂

20 ml

4℃

常温

2

RTD8103-02

试剂B-植物蛋白提取缓冲液II

15 ml

4℃

3

RTD8103-03

试剂C-蛋白纯化剂

15 ml

4℃ 避光

4

RTD8103-05

溶液E-蛋白沉淀剂

40 ml

常温(配制后4℃)

5

RTD8103-04

试剂D-漂洗缓冲液

10 ml

-20℃

湿冰

6

DT0140P-01

1M DTT

1 ml

4℃ (配制后-20℃)

7

PC2030-03

蛋白酶抑制剂混合物(100×,植物样品用)

0.2 ml

-20℃

8

PL080-01

5×MonoClolor 蛋白上样缓冲液(变性,还原)

1 ml

-20℃

9

-

说明书

-

-

-

 

 

● 产品简介

本产品能够有效裂解各种植物器官(如叶片,根,茎,果实,种子,花),去除各种植物样品(包括富含次生代谢物质和多糖多酚的植物)中常见的污染,如多糖,多酚,脂类,色素,次生代谢物等,得到的高纯度蛋白样品,可以用于SDS-PAGE凝胶电泳,Western印迹分析以及双向电泳(2D电泳)。

该试剂盒含有除丙酮外的其他所有试剂,使用方便,能在3小时内得到高纯度的蛋白样品。

按照每次提取使用0.7ml试剂B计算,该试剂盒可以至少使用20次。

●  使用方法:

实验准备材料:

液氮;研钵;1.5ml离心管;一次性注射器;丙酮;80%丙酮;70℃水浴锅;干浴器;冷冻离心机;制冰机;涡旋振荡器。

一. 样品破碎:

1.1 取植物样本,在液氮条件下,用研钵充分研磨成粉末。

关键步骤:此步骤非常重要,样本研磨越细越好,研磨不彻底会导致蛋白浓度偏低。

二. 沉淀杂质:

2.1 取1.5 ml离心管,加入1 ml即用型试剂A(按照下表配制),迅速将约0.1克粉末加入其中,漩涡混匀,RT 放置5分钟。

关键步骤:样品粉末量不能超过0.1克,否则将导致蛋白提取得率和纯度大大降低。

即用型试剂A-样本杂质去除剂配制

 

即用型试剂A

 

1个样品

2个样品

n个样品

试剂A-样本杂质去除剂

0.5 ml

1 ml

n×0.5 ml

丙酮

0.5 ml

1 ml

n×0.5 ml

1M DTT

10 μl

20 μl

n×10 μl

 

2.212000g4℃离心5分钟,去除上清,保留沉淀。

注:观察沉淀颜色,如沉淀颜色为绿色,继续步骤2.3;如沉淀颜色为浅色或白色,直接进行步骤2.4。

2.3 沉淀中加入1 ml即用型试剂A,漩涡混匀,RT放置5分钟,12000g4℃离心5分钟。

2.4 沉淀中加入1 ml 预冷的丙酮(自备,试剂盒不提供)和10 μl DTT溶液,漩涡震荡(此时溶液状态应为白色悬液),彻底重悬,12000g4℃离心5分钟,去除上清,收集沉淀。

2.5 快甩离心数秒,残留上清用移液器彻底吸弃,沉淀物通风晾干1-2分钟至沉淀干燥。

 关键步骤:沉淀不能过分干燥,否则会影响以下步骤蛋白的溶解性。

三. 蛋白粗提:

3.1 蛋白沉淀中加入0.7 ml 即用型试剂B(按照下表配制),漩涡震荡,彻底重悬沉淀(此时溶液状态为淡蓝色的悬浮溶液);70℃水浴1小时,间歇混匀。

即用型试剂B-植物蛋白提取缓冲液配制:

 

即用型试剂B

试剂B-植物蛋白提取缓冲液II

0.7 ml

5 ml

10 ml

蛋白酶抑制剂混合物(100×)

7 μl

50 μl

100 μl

1M DTT

7 μl

50 μl

100 μl

 

3.212000g4℃离心10分钟,小心取上清(通常可取600 μl,溶液为淡蓝色)于1.5ml离心管中,不要吸取沉淀。

注:此步骤得到的蛋白溶液可以进行大多数蛋白实验,如WB。如要进行双向电泳(2D电泳)实验,继续以下步骤。

四. 蛋白纯化:

4.1 加入与上清等体积的试剂C(注:试剂C上层为保护相,应该吸取下部的淡黄色液体),剧烈颠倒震荡后常温放置1-2分钟,12000gRT 离心5分钟,溶液分成两层,上层溶液为蓝色,蛋白位于下层溶液中。

注:试剂C有腐蚀性,请在通风橱内操作,注意防护。

4.2 用一次性注射器小心吸取下层溶液(通常可取350 μl)于1.5 ml离心管中,加入等体积试剂D,剧烈颠倒混匀,12000gRT 离心5分钟,蛋白位于上层溶液中,收集上层溶液(通常可取150-200 μl)于1.5ml离心管中。

五. 蛋白沉淀:

5.1 蛋白溶液中加入5倍体积溶液E(注意是否已经按照标签所示加入甲醇),颠倒混匀,此时可见有絮状沉淀生产,-20℃ 沉淀30分钟。

    注:微量蛋白的提取可以-20℃过夜沉淀。

5.212000g4℃离心10分钟,收集蛋白沉淀,去除上清。

注:正常的蛋白沉淀接近无色,如颜色为褐色或淡黄色说明蛋白不纯,不能用于双向电泳实验。重复步骤3.1-5.2,直至蛋白沉淀接近无色。

5.3 沉淀中加入1ml 溶液E(注意是否已经按照标签所示加入甲醇),彻底重悬沉淀,12000rpm4℃离心5分钟,弃上清。

5.4 沉淀中加入1ml预冷的80%丙酮(自备,试剂盒不提供)和10 μl DTT,彻底重悬沉淀,12000g4℃离心5分钟,弃上清。

5.5 快甩离心数秒,残留上清移液器彻底吸弃,沉淀物通风晾干1-2分钟至沉淀干燥。

   关键步骤:沉淀不能过分干燥,否则不好溶解。

六. 蛋白溶解:

6.1 沉淀中溶解于适量PBS溶液或者适当体积样品缓冲液溶解,-20℃或-80℃贮存。

注: ① 如进行双向电泳,样品溶于双向电泳样品缓冲液中;如进行单向电泳,样品溶于1×SDS-PAGE 上样缓冲液中。

 ② 由于提取过程中使用了DTT,为了避免DTT对蛋白浓度测定的干扰,蛋白定量时尽量选择Bradford方法。

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電話 : 0919055272

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