植物总蛋白提取试剂盒-通用型
Plant Total Protein Isolation Kit(for general use)
货号 | 名称 | 规格 |
RTD8103 | 植物总蛋白提取试剂盒-通用型 | 20 次 |
● 产品组成:
序号 | 产品货号 | 名称 | 规格 | 贮存 | 运输 |
1 | RTD8103-01 | 试剂A-样本杂质去除剂 | 20 ml | 4℃ | 常温 |
2 | RTD8103-02 | 试剂B-植物蛋白提取缓冲液II | 15 ml | 4℃ | |
3 | RTD8103-03 | 试剂C-蛋白纯化剂 | 15 ml | 4℃ 避光 | |
4 | RTD8103-05 | 溶液E-蛋白沉淀剂 | 40 ml | 常温(配制后4℃) | |
5 | RTD8103-04 | 试剂D-漂洗缓冲液 | 10 ml | -20℃ | 湿冰 |
6 | DT0140P-01 | 1M DTT | 1 ml | 4℃ (配制后-20℃) | |
7 | PC2030-03 | 蛋白酶抑制剂混合物(100×,植物样品用) | 0.2 ml | -20℃ | |
8 | PL080-01 | 5×MonoClolor 蛋白上样缓冲液(变性,还原) | 1 ml | -20℃ | |
9 | - | 说明书 | - | - | - |
● 产品简介
本产品能够有效裂解各种植物器官(如叶片,根,茎,果实,种子,花),去除各种植物样品(包括富含次生代谢物质和多糖多酚的植物)中常见的污染,如多糖,多酚,脂类,色素,次生代谢物等,得到的高纯度蛋白样品,可以用于SDS-PAGE凝胶电泳,Western印迹分析以及双向电泳(2D电泳)。
该试剂盒含有除丙酮外的其他所有试剂,使用方便,能在3小时内得到高纯度的蛋白样品。
按照每次提取使用0.7ml试剂B计算,该试剂盒可以至少使用20次。
● 使用方法:
实验准备材料:
液氮;研钵;1.5ml离心管;一次性注射器;丙酮;80%丙酮;70℃水浴锅;干浴器;冷冻离心机;制冰机;涡旋振荡器。
一. 样品破碎:
1.1 取植物样本,在液氮条件下,用研钵充分研磨成粉末。
关键步骤:此步骤非常重要,样本研磨越细越好,研磨不彻底会导致蛋白浓度偏低。
二. 沉淀杂质:
2.1 取1.5 ml离心管,加入1 ml即用型试剂A(按照下表配制),迅速将约0.1克粉末加入其中,漩涡混匀,RT 放置5分钟。
关键步骤:样品粉末量不能超过0.1克,否则将导致蛋白提取得率和纯度大大降低。
即用型试剂A-样本杂质去除剂配制
| 即用型试剂A | ||
| 1个样品 | 2个样品 | n个样品 |
试剂A-样本杂质去除剂 | 0.5 ml | 1 ml | n×0.5 ml |
丙酮 | 0.5 ml | 1 ml | n×0.5 ml |
1M DTT | 10 μl | 20 μl | n×10 μl |
2.212000g4℃离心5分钟,去除上清,保留沉淀。
注:观察沉淀颜色,如沉淀颜色为绿色,继续步骤2.3;如沉淀颜色为浅色或白色,直接进行步骤2.4。
2.3 沉淀中加入1 ml即用型试剂A,漩涡混匀,RT放置5分钟,12000g4℃离心5分钟。
2.4 沉淀中加入1 ml 预冷的丙酮(自备,试剂盒不提供)和10 μl DTT溶液,漩涡震荡(此时溶液状态应为白色悬液),彻底重悬,12000g4℃离心5分钟,去除上清,收集沉淀。
2.5 快甩离心数秒,残留上清用移液器彻底吸弃,沉淀物通风晾干1-2分钟至沉淀干燥。
关键步骤:沉淀不能过分干燥,否则会影响以下步骤蛋白的溶解性。
三. 蛋白粗提:
3.1 蛋白沉淀中加入0.7 ml 即用型试剂B(按照下表配制),漩涡震荡,彻底重悬沉淀(此时溶液状态为淡蓝色的悬浮溶液);70℃水浴1小时,间歇混匀。
即用型试剂B-植物蛋白提取缓冲液配制:
| 即用型试剂B | ||
试剂B-植物蛋白提取缓冲液II | 0.7 ml | 5 ml | 10 ml |
蛋白酶抑制剂混合物(100×) | 7 μl | 50 μl | 100 μl |
1M DTT | 7 μl | 50 μl | 100 μl |
3.212000g4℃离心10分钟,小心取上清(通常可取600 μl,溶液为淡蓝色)于1.5ml离心管中,不要吸取沉淀。
注:此步骤得到的蛋白溶液可以进行大多数蛋白实验,如WB。如要进行双向电泳(2D电泳)实验,继续以下步骤。
四. 蛋白纯化:
4.1 加入与上清等体积的试剂C(注:试剂C上层为保护相,应该吸取下部的淡黄色液体),剧烈颠倒震荡后常温放置1-2分钟,12000gRT 离心5分钟,溶液分成两层,上层溶液为蓝色,蛋白位于下层溶液中。
注:试剂C有腐蚀性,请在通风橱内操作,注意防护。
4.2 用一次性注射器小心吸取下层溶液(通常可取350 μl)于1.5 ml离心管中,加入等体积试剂D,剧烈颠倒混匀,12000gRT 离心5分钟,蛋白位于上层溶液中,收集上层溶液(通常可取150-200 μl)于1.5ml离心管中。
五. 蛋白沉淀:
5.1 蛋白溶液中加入5倍体积溶液E(注意是否已经按照标签所示加入甲醇),颠倒混匀,此时可见有絮状沉淀生产,-20℃ 沉淀30分钟。
注:微量蛋白的提取可以-20℃过夜沉淀。
5.212000g4℃离心10分钟,收集蛋白沉淀,去除上清。
注:正常的蛋白沉淀接近无色,如颜色为褐色或淡黄色说明蛋白不纯,不能用于双向电泳实验。重复步骤3.1-5.2,直至蛋白沉淀接近无色。
5.3 沉淀中加入1ml 溶液E(注意是否已经按照标签所示加入甲醇),彻底重悬沉淀,12000rpm4℃离心5分钟,弃上清。
5.4 沉淀中加入1ml预冷的80%丙酮(自备,试剂盒不提供)和10 μl DTT,彻底重悬沉淀,12000g4℃离心5分钟,弃上清。
5.5 快甩离心数秒,残留上清移液器彻底吸弃,沉淀物通风晾干1-2分钟至沉淀干燥。
关键步骤:沉淀不能过分干燥,否则不好溶解。
六. 蛋白溶解:
6.1 沉淀中溶解于适量PBS溶液或者适当体积样品缓冲液溶解,-20℃或-80℃贮存。
注: ① 如进行双向电泳,样品溶于双向电泳样品缓冲液中;如进行单向电泳,样品溶于1×SDS-PAGE 上样缓冲液中。
② 由于提取过程中使用了DTT,为了避免DTT对蛋白浓度测定的干扰,蛋白定量时尽量选择Bradford方法。
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